En este caso el animal afectado es una hembra blazzing blizzard de gecko leopardo (Eublepharis macularius) con una pequeña deformidad en el párpado izquierdo. Le falta un trozo del párpado superior.


Este gecko desde que lo tengo ha padecido infecciones recidivantes (que vuelven una y otra vez) en este ojo, la infección inicial podría haber sido por un trozo de fibra de coco del sustrato. El excesivo lamido para intentar quitar el trozo o la presencia de bacterias en la fibra podría haber sido el foco inicial desde el que se desarrollo la patología.

Las primeras veces el animal fue tratado con suero fisiológico para la limpieza del ojo y un colirio antibactérico inespecífico para tratar de eliminar la posible infección.

Al ver que esta volvía en más de una ocasión llevé una muestra al laboratorio para procesarla, identificar el microorganismo que producía la patología y dar con un tratamiento definitivo contra este.

La única sintomatología mostrada por el animal es que permanece con el ojo cerrado y la producción de un material mucoso que cubre toda lo superficie del mismo. Mantiene el apetito, no hay una pérdida de peso aparente y realiza todas las actividades habituales de forma normal.

En primer lugar lo que hacemos es tomar una muestra de ese material mucoso, que será la que procesaremos a continuación. Para ello utilizamos unos hisopos o torundas estériles con la que intentaremos recoger la mayor cantidad posible de muestra.


Una vez en el laboratorio se realizan las pruebas rutinarias. Una tinción GRAM (en ESTE TEMA podéis ver un resumen de en que consiste), con la que podremos ver la morfología del microorganismo implicado (en algunos casos). En este caso nos encontramos con gran cantidad de bacilos gram negativos, y hasta aquí podemos apurar el diagnóstico con esta prueba, para identificar en que género y especie están encuadrados nuestros bacilos tenemos que realizar otras pruebas diferentes. Son bacilos gram negativos las Pseudomonas spp., Klebsiella spp., Salmonella spp., Escherichia coli, Proteus spp., Enterobacter spp., etc...


El siguiente paso es sembrar nuestra muestra problema en dos medios de cultivo principales, uno inespecífico en el que crecen casi todas las bacterias y que es el Agar Sangre (AS) y otro específico para bacterias gram negativas como el Agar MacConkey (MC), en el que además con el crecimiento de las bacterias podremos ver si fermentan o no la lactosa, ya que es uno de los aditivos incorporados y nos ayudará en la identificación.


Con las colonias obtenidas en estos medios (con fermentación de la lactosa en MC, que queda reflejado con el color rosa de las colonias; y un crecimiento en dos fases, con el centro rosa y un circulo blanquecino alrededor) y realizando una prueba sencilla llamada prueba de la oxidasa (con resultado negativo) podemos decir que estamos ante una bacteria de la familia Enterobacteriaceae o lo que es lo mismo, nos encontramos con una enterobacteria. Para identificar a cual nos enfrentamos concretamente tendremos que realizar una siembra en otros medios específicos que son el Agar Verde Brillante (VB) y el Agar XLD (XLD).

Además se siembran dos placas de Agar Mueller Hinton (MH) en las que además se  añadirán discos de antibióticos, realizando lo que se llama un antibiograma. En el que podremos ver que sensibilidad frente a antibióticos presenta la cepa de bacterias implicada en el proceso. Gracias a esto podremos elegir el antibiótico más adecuado por su sensibilidad y el tipo de cuadro que presenta el animal (sistémico, local, etc...). Al tratarse de una conjuntivitis deberíamos usar un colirio o crema antibiótica.

Tras incubar durante 24 horas estos medios inoculados vemos muy poco crecimiento y sólo en la zona del inóculo inicial en el VB, mientras que en el caso del XLD podemos observar un buen crecimiento por gran parte de la siembra.

En el caso del XLD podemos observar una variación de color entre las zonas con un crecimiento más masivo (de color rojo-rosaceo) y los bordes de estas zonas o los lugares en los que encontramos colonias aisladas (de color amarillento). Este medio varía de color en función de las variaciones de pH producidas por las bacterias al utilizar los diferentes componentes que lo forman. Las bacterias que pueden fermentar los azúcares del medio producen una acidificación del mismo produciendo el color amarillo.

En nuestro caso debemos fiarnos más de lo que se produce en los bordes del crecimiento, ya que al haber un crecimiento masivo de bacterias pueden consumir todos los azúcares rápidamente y empezar a utilizar otros compuestos, realcalinizando el medio. En las zonas de colonias aisladas vemos un intenso color amarillo que nos indica acidificación.


Con el aspecto de las colonias que han crecido en MC, XLD y VB y la coloración tan heterogénea que presentan las placas, la presencia de bacilos gram negativos en nuestra tinción y la prueba negativa de oxidasa podemos concluir que la bacteria pertenece al género Klebsiella. Son bacterias encuadradas dentro de las enterobacterias, gram negativas y que principalmente están asociadas a patologías respiratorias como las neumonías. En el caso de los reptiles están bacterias se encuentran habitualmente en la cavidad bucal y como ocurre con otras como pueden ser Salmonella spp. o Pseudomonas spp. no tienen porque producir ninguna patología.

Las especies pertenecientes a este género son: K. granulomatis, K. ornithinolytica, K. oxytoca, K. ozaenae, K. planticola, K. pneumoniae, K. rhinoscleromatis y K. terrigena y para identificar concretamente a cual pertenece deberíamos realizar un análisis bioquímico de las colonias, pero al ser irrelevante no lo realizamos.

Por último, pero que en realidad es a lo que debemos dar más importancia en nuestro caso, se analizan los antibiogramas. Y nos encontramos las siguientes sensibilidades:

Sensible a Sulfametoxazol-Trimetoprim (SxT), Enrofloxacina (ENR), Norfloxacina (NOR5), Marbofloxacina (MAR), Gentamicina (GM), Cefotaxima (CTX30), Cefoxitina (FOX30) y OBX10.

Resistente a Penicilina (P10), Amoxicilina + Ácido Clavulánico (AMC), Ampicilina (AM10), Eritromicina (E), Cefoperazona (CFP75) y Cefalexina (CN).


Podemos apreciar en el antibiograma como se ha producido un crecimiento masivo de colonias que ocupan toda la placa de MH menos un círculo alrededor de los antibióticos ante los que han mostrado cierta sensibilidad (en algunos casos no lo suficiente como para ser consideradas sensibles). Ese halo de inhibición creado por los antibióticos se mide y se extrapola a unas tablas donde se nos indica si el microorganismo es sensible, posee una sensibilidad moderada o es resistente al antibiótico.

Con este listado de antibióticos a los que es sensible nuestra cepa de Klebsiella spp. y al ser un problema ocular el elegido será la Gentamicina que podemos encontrar como crema antibiótica, facilitando su aplicación.

Un aporte excelente tio, muchas gracias por compartir tus experiencias con nosotros !!!!